連續稀釋計算器
輸入初始濃度、每步稀釋倍數與稀釋次數，即時算出連續稀釋後的最終濃度與總稀釋倍數，適用於 qPCR 標準曲線與細菌計數。
輸入資料
計算結果
重點速覽：連續稀釋（serial dilution）是以固定倍數重複稀釋，逐步把濃度降到可量測範圍的標準技術，廣泛用於微生物 CFU 計數、qPCR 標準曲線與抗體滴度測定。每步稀釋 DF 倍，經 n 步後最終濃度 Cₙ = C₀ ÷ DFⁿ，總稀釋倍數為 DFⁿ。例如 10 倍稀釋 6 次，總稀釋倍數即 10⁶。
計算公式
最終濃度：Cₙ = C₀ ÷ DFⁿ。
總稀釋倍數：DFⁿ。
n 為稀釋步數、DF 為每步稀釋倍數、C₀ 為初始濃度。
$$C_n = \dfrac{C_0}{DF^{\,n}}$$$$\text{Total DF} = DF^{\,n}$$使用說明
- 輸入起始溶液的初始濃度 C₀（單位自訂）。
- 輸入每步稀釋倍數 DF（如 10 表示 1:10）與稀釋次數 n。
- 右側即時顯示最終濃度與總稀釋倍數。
10 倍連續稀釋系列（C₀ = 1×10⁶ CFU/mL）
| 稀釋步數 n | 總稀釋倍數 | 濃度（CFU/mL） |
|---|---|---|
| 0（原液） | 1 | 1,000,000 |
| 1 | 10 | 100,000 |
| 2 | 100 | 10,000 |
| 3 | 1,000 | 1,000 |
| 4 | 10,000 | 100 |
| 6 | 1,000,000 | 1 |
菌落塗盤計數時，選每皿約 30–300 CFU 的稀釋度最準確，再乘回總稀釋倍數還原原液濃度。
理財情境案例
細菌 CFU 計數
菌液初始約 1×10⁶ CFU/mL，做 6 次 10 倍連續稀釋（每步取 0.1 mL 加 0.9 mL）。
第 6 管濃度 = 1,000,000 ÷ 10⁶ = 1 CFU/mL，總稀釋倍數 10⁶。
選菌落數落在 30–300 的稀釋度計數，再乘回該管的總稀釋倍數即得原液活菌濃度。
qPCR 標準曲線
標準品初始 100 mg/mL，做 3 次 10 倍稀釋。
第 3 管濃度 = 100 ÷ 10³ = 0.1 mg/mL，總稀釋倍數 1000。
各稀釋點濃度依 10 倍遞減，取對數作 X 軸即可建立線性標準曲線做絕對定量。
常見問題
稀釋次數 n 是指管數還是轉移次數？
n 指轉移（稀釋）步數。n=0 為原液，做一次 1:10 稀釋後 n=1，如此類推。做 n 次稀釋會得到 n+1 管溶液（含原液）。本計算器的 Cₙ 即第 n 步後那一管的濃度。
稀釋倍數 DF=10 是怎麼配？
1:10 稀釋（DF=10）指取 1 份樣品加 9 份稀釋液，總體積放大 10 倍、濃度降為十分之一。例如取 0.1 mL 菌液加 0.9 mL 稀釋液即為 10 倍稀釋。若填 DF=2 則為兩倍稀釋（1 份樣品加 1 份稀釋液）。
最終濃度的單位是什麼？
與初始濃度 C₀ 同單位。本計算器不限定單位，你填 CFU/mL、拷貝數/μL、mg/mL 等，最終濃度就是相同單位。稀釋只改變數值大小，不改變濃度的物理意義。
為什麼細菌計數要選 30–300 CFU 的稀釋度？
菌落太多（>300）會重疊難以準確計數並低估；太少（<30）則統計誤差大。落在 30–300 CFU 的皿計數最可靠，計數後乘以該稀釋度的總稀釋倍數與塗盤體積係數，即可還原原液的活菌濃度。
連續稀釋和一次大倍數稀釋有何不同？
要達到很高的總稀釋倍數（如 10⁶）時，一次稀釋需取極微量樣品，移液誤差大且不精準。連續稀釋分多步、每步倍數適中，能把累積誤差降到最低，因此高倍數稀釋幾乎都採用連續稀釋。
相關工具
參考資料
內容審核：香港計算器科學團隊。連續稀釋公式與 CFU 計數原則參考標準微生物學實驗手冊。